J. Am. Chem. Soc. | 自中而下质谱方法定量分析G蛋白偶联受体中的磷酸化状态

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本周分享一篇JACS上的文章“Middle-Down Mass Spectrometry Reveals Activity-Modifying Phosphorylation Barcode in a Class C G Protein-Coupled Receptor”,通讯作者是来自美国西北大学分子生物系的Reza Vafabakhsh,其主要研究兴趣是开发开发定量生物物理和细胞生物学分析技术。

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G蛋白偶联受体(GPCR)是人类最大的膜受体家族,它们介导人体几乎所有方面生理功能。过去研究表明,特定的GPCR磷酸化状态可能是一种使潜在信号结果多样化的机制(又称为磷酸化条形码,Phosphorylation Barcode)。因此,确定GPCR磷酸化状态对于理解GPCR的受体生理学和信号传导特性至关重要。
在基于质谱的蛋白质组学分析流程中,除了使用广泛水解酶获得短肽的自下而上(Bottom-up)方法和分离分析完整蛋白质的自上而下(Top-down)方法外,还有折中的“自中而下(Middle-down)”方法,它是通过表征感兴趣的蛋白质区域获得其信息,同时简化了大蛋白或疏水蛋白的分析难度,适用于高度修饰的蛋白质及结构域。mGluR2是一种C类GPCR,可介导中枢神经系统的突触传递,并已成为治疗焦虑、精神分裂症、疼痛障碍和成瘾的候选治疗靶点。mGluR2有14个可能的磷酸化位点,它们都位于C末端尾部。因此,作者在本文中使用自中而下与平行反应监测(Parallel Reaction Monitoring,PRM)耦合的方法,鉴定了常规和激动剂诱导的mGluR2的C端序列磷酸化位点,量化了磷酸化的位置及丰度。

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为了选择性地分离和分析mGluR2 C末端,作者在表达细胞中使蛋白N末端带上EGFP,并在序列中添加TEV酶切位点,该受体可非常有效地输送到质膜并且具有功能,通过抗GFP免疫沉淀和TEV消化分离可获得完整C末端结构域。随后LC-MS通过PRM来定量该结构域中总磷酸化水平和磷酸化的位置分布。质谱中指定磷酸化化学计量的离子被分离,然后进行更高能量的碰撞解离(HCD),以产生保持修饰的肽段级碎片离子,在检测到的碎片离子池中C末端尾部被分为四个部分,在这些区域内磷酸化整体水平被相对定量,然后通过比较碎片离子的强度可量化异构体的相对丰度。
作者发现在分离的C端结构域中,每分子C端可以具有0到4个总磷酸化修饰。且观察到所有磷酸化化学计量都存在多个洗脱峰,表明这些磷酸化状态以多种异构体的形式存在。且在量化了mGluR2的基础磷酸化状态后,作者研究了激活状态mGluR2磷酸化的影响。具体表现为,L-谷氨酸处理后磷酸化幅度发生显著变化,且虽然总体上C末端磷酸化的密度增加,但这种增长分布并不是均匀的,这暗示着mGluR2的C端结构域中的磷酸化以区域特异性方式影响受体信号传导。因此最后作者还进行了定点诱变,以探索磷酸化对mGluR2信号传导的影响,确定了mGluR2在跨膜螺旋7(TM7)近端区域的磷酸化在功能上调节受体对激动剂的敏感性。

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总的来说,本文开发了一种结合自中而下质谱策略的定量方法,以分析人类细胞中GPCR的磷酸化状态,并预计这种技术将被调整并应用于其他受体,以广泛阐明细胞内GPCR磷酸化情况。

本文作者:FTY

责任编辑:JGG

原文链接:https://pubs.acs.org/doi/10.1021/jacs.2c10697

文章引用:DOI:10.1021/jacs.2c10697


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