Science | 利用 CRISPR 介导的 RNA 断裂修复机制实现位点特异的 RNA 切除

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分享一篇最近发表在 Science 上的文章,本文的题目是“Repair of CRISPR-guided RNA breaks enables site-specific RNA excision in human cells”本文的核心是作者们发现可以利用嗜热链球菌 Type III CRISPR 复合物,在人类细胞中的 RNA 上实现位点特异的切除本文的通讯作者是来自美国蒙大拿州立大学的 Artem Nemudryi  Blake Wiedenheft

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CRISPR 基因组编辑技术已经被广泛地应用到了生命科学等领域,这一技术对于基因突变所导致的疾病的治疗具有极为重要的意义。第一代 CRISPR 基因编辑技术,基于 Cas9 核酸内切酶在基因组上产生双链断裂,细胞随即对断裂的位点进行修复,但是细胞在进行修复的时候,往往具有很大的不确定性,比如会产生不确定数目碱基(甚至大片段)的插入和缺失等。因此,相比于直接在基因组上进行编辑,对 RNA 进行编辑是一种更为安全的方式。
Type VI CRISPR 介导的核糖核酸内切酶 Cas13 被用于 RNA 的敲低,但是,Cas13 本身具有的核酸酶活性也会造成 non-targeting RNA 的降解。与 Cas13 不同,Type III 复合体可以精确地实现 RNA 上 6 的倍数的核苷酸切除。因此,作者们由此想到,可以利用这一点,来实现 RNA 上位点特异性的核苷酸切除。
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作者们直接在 HEK-293T 细胞中转染了 SthCsm 复合物,靶向 PARK7 RNA 中的某一个区域,作者用 amplicon sequencing 确定了靶向区域的确出现了 6 倍数的碱基的切除。随后,作者们想到 SthCsm 切除 RNA 后,会产生一个 2’,3’-cyclic phosphate 和 5’-OH,而哺乳动物细胞内的 RNA 连接酶 RTCB 能够发挥连接这两个末端的功能,于是,作者们在细胞中敲除了 RTCB 后,发现靶向区域被修复的比例明显地降低了。
根据 ClinVar 数据库的记录,我们基因组中大概有 4 万个 nonsense 突变(包括终止密码子),比如 CFTR W1282X 突变体会导致其 RNA 含量降低,导致蛋白合成不足,最终发展成为囊性纤维化。作者们设想,可以利用 SthCsm 实现 W1282X 位点特异性的切除,从而维持 CFTR RNA 的稳定性。作者们用内源携带 CFTR W1282X 的永生化细胞株进行 SthCsm RNA 编辑,发现尽管 SthCsm 会降低 RNA 的数量,但是能够产生编辑的 RNA,从而 by-pass W1282X 所造成的 nonsense 突变。
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总之,本文探究了 SthCsm 在 RNA 上位点特异性的编辑能力,并且提出它对于未来基因治疗具有借鉴意义。
本文作者:LZH
责任编辑:LYC
原文链接:https://www.science.org/doi/10.1126/science.adk5518
文章引用:10.1126/science.adk5518

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